TA克隆实验原理　

    TA克隆实验原理
    TA克隆是利用耐热聚合酶，如Taq聚合酶、Tfl、Tth等具有末端转移酶活性，而不具有3 一5外切酶的校准活性，即在PCR产物的两个3 末端加上未配对的单一A凸出尾 ，质粒载体提供线性3末端单一的T凸出尾，使该载体能够直接与PCR产物连接。TA克隆技术比其它PCR克隆方法有更高的重组效率。
    TA克隆只需4个步骤：①扩增目的PCR产物；②制备T克隆载体；③PCR产物直接克隆至T载体上④转化并筛选重组子。
    TA克隆实验步骤
    （1）扩增后的PCR产物与T载体的连接
    取1只无菌Ep管、用微量进样器按下列顺序加入各成分。
    10×T4 DNA Ligase Buffer 2.5 ul
    PCR产物约0.3 pmol
    T载体约0.03pmol
    T4 DNA Ligase 1ul
    ddH2O 加至 25ul
    *1 DNA的摩尔数应控制在载体DNA摩尔数的3－10倍。
    *2 相同末端的载体与DNA进行连接时，应首先将载体进行去磷酸化处理，以防止其自身环化。
    （2）盖好盖子，用手指轻弹Ep管数次，并于台式离心机离心2s 以集中溶液。
    （3）将反应管放入4℃金属浴中反应20h。
    （4）取出约2ul的DNA连接液进行琼脂糖凝胶电泳，鉴定连接结果，与未经连接的质粒DNA和酶切DNA一同作电泳。
    （5）用0.1×TE将连接混合物稀释至50ul，使用10ul转化大肠杆菌感受态细胞。
    （6）通过Amp抗性来筛选转化子，转化子扩增后，可将转化的质粒提取出，进行电泳、酶切等进一步鉴定。